Количественное определение в воде не только общего числа энтерококков, но и отдельных видов имеет значение при оценке качества воды, поскольку санитарнопоказательное значение каждого из них различно (Г. Г. Калина, 1973). Обнаружение Str. faecalis подтверждает безусловно недавнее хозяйственно-бытовое загрязнение. По соотношению различных видов иногда можно составить представление о происхождении фекального загрязнения. В ряде случаев необходимо быстро и точно определить как всю группу энтерококков, так и соотношение количества отдельных видов.[ ...]
Впоследствии был предложен желчно-дрожжевой агар для определения устойчивости к желчи, где была использована плотная основа и добавлены стимуляторы роста в виде дрожжевого препарата (цит. по Г. П. Калине, 1966).[ ...]
Среда Чесбро и Ивенс для определения устойчивости к щелочной реакции содержит, помимо дрожжевого препарата, еще и глюкозу. Г. П. Калина считает возможным использовать для этой цели щелочно-полимиксиновую среду. И. Н. Турчинский рекомендует вместо солевого бульона солевой агар из сухого питательного агара.[ ...]
Развитие микроорганизмов в жидких средах отмечают визуально по помутнению среды пли воронкообразному осадку на дне при встряхивании кругообразными движениями, что весьма субъективно. Один и тот же результат разными исследователями может быть истолкован по-разному. Кроме того, при использовании нестандартных мя-со-пептонных бульонов энтерококки могут не развиваться или плохо развиваться в малопитательных средах, что дает ложноотрицательные результаты.[ ...]
С. Жековым из Народной Республики Болгарии. Рост в жидких средах оценивали визуально и путем последующего высева на питательный агар Хоттингера с 1% глюкозой. Результаты фиксировали ежедневно в течение 3 сут.[ ...]
Выявлено существенное преимущество плотных сред для определения тестов Шермена по стабильности результатов, простоте и объективности учета результатов (наличие или отсутствие видимости роста), быстроте получения ответа ( через 18—20 ч). Одновременно с этим на жидких средах в ряде случаев было отмечено несовпадение результатов визуальной оценки и высева на плотную среду, особенно в первые сутки инкубации. Лучшую оценку получили жидкие среды с глюкозой.[ ...]
Эти исследования позволяют нам рекомендовать для быстрого и точного определения тестов Шермена плотные среды с добавлением глюкозы на основе стандартного сухого питательного агара из гидролизата рыбы, который содержит необходимые для размножения энтерококков питательные вещества. Целесообразно добавлять также дрожжевые препараты. Предложенные модификации просты в выполнении, результаты четко определяются после 24 ч инкубации посевов при 37°С. На желчном и щелочном агаре время выращивания может быть сокращено до 18—20 ч. Метод существенно экономит среды, на одной чашке можно испытывать до 8 штаммов одновре-менно.[ ...]
Метод определения каталазной активности. У бактерий, обладающих ВЫСОКОЙ к’атяттячнпй активностью, этот тест можно определять путем нанесения петлей капли перекиси водорода непосредственно на колонию (подозрительные колонии на мембранных фильтрах) или на рост в штрихе. Образование пузырьков газа — «вскипание» отмечают как положительный результат.[ ...]
Методы определения видовой принадлежности энтерококков. Применявшиеся ранее пептонно-дрожжевые жидкие среды для определения сахаролитической активности энтерококков дают возможность получать ответ только через 2 сут, причем иногда нечеткий. Мы испытали плотные среды на основе сухого питательного агара, оптимального для роста энтерококков; кроме того, использовали такие приемы ускорения роста и ферментной активности энтероккков, как создание анаэробных условий при посеве уколом в толщу среды, массивный засев культуры по принципу большой колонии. Энтерококки ферментируют углеводы без образования газа, что дает возможность определять способность ферментировать углеводы до образования кислоты у 15—20 штаммов одновременно на одной чашке.[ ...]
Метод определения ферментации углеводов (сорбит, маннит, арабиноза, раффиноза, лактоза и др.). Агар с соответствующим углеводом и индикатором бромтимоловым синим разливают в чашки Петри толстым слоем, подсушивают, чтобы на поверхности среды не было следов влаги; чашку со дна делят на квадраты (по 15—20 квадратов на одной чашке). Испытуемые штаммы засевают уколом и небольшой бляшкой вокруг него. Инкубируют 18 ч при 37°С. Положительный результат отмечают в случае изменения бутылочного цвета среды в желтый в месте укола и посева.[ ...]
Вернуться к оглавлению