![Для выяснения влияния присутствующих в культуральной жидкости продуктов метаболизма — полисахаридов, белков и других на эффективность флокуляции были проведены опыты по концентрированию как нативной, так и отмытой культур E. coli [157]. В качестве последней использовались клетки, дважды отмытые физиологическим раствором, которые отделялись от раствора центрифугированием, а затем ресуспен-зировались до исходной концентрации 0,1 М раствором хлорида натрия. Полученные данные (см. рис. 6.4) свидетельствуют о том, что расход флокулянта, необходимый для достижения одной и той же степени осаждения, для отмытых клеток значительно (в 2—5 раз) меньше, чем для исходной культуральной жидкости. Это можно объяснить тем, что формирование адсорбционного слоя полиэлектролита в последнем случае происходит не непосредственно на клеточной поверхности, а в капсульном липополисахаридном слое, размеры которого (10—150 нм) могут существенно превышать линейные размеры макромолекул флокулянтов. При этом возможно также взаимодействие между реагентом и компонентами, формирующими поверхность и слизистую оболочку клетки, а также компонентами среды и продуктами метаболизма. Это приводит к дополнительному расходу флокулянта. Эти соображения подтверждают результаты опытов, свидетельствующие о том, что добавление к суспензии отмытых клеток полисахарида (декстрана) или белка (желатины) вызывает существенное увеличение расхода полиэлектролита, необходимого для резкого снижения п/по. При этом было показано, что на эффективность извлечения клеток из культуральной жидкости с помощью полиэлектролитов наибольшее влияние оказывают белковые компоненты.](/static/pngsmall/293925220.png)
Для выяснения влияния присутствующих в культуральной жидкости продуктов метаболизма — полисахаридов, белков и других на эффективность флокуляции были проведены опыты по концентрированию как нативной, так и отмытой культур E. coli [157]. В качестве последней использовались клетки, дважды отмытые физиологическим раствором, которые отделялись от раствора центрифугированием, а затем ресуспен-зировались до исходной концентрации 0,1 М раствором хлорида натрия. Полученные данные (см. рис. 6.4) свидетельствуют о том, что расход флокулянта, необходимый для достижения одной и той же степени осаждения, для отмытых клеток значительно (в 2—5 раз) меньше, чем для исходной культуральной жидкости. Это можно объяснить тем, что формирование адсорбционного слоя полиэлектролита в последнем случае происходит не непосредственно на клеточной поверхности, а в капсульном липополисахаридном слое, размеры которого (10—150 нм) могут существенно превышать линейные размеры макромолекул флокулянтов. При этом возможно также взаимодействие между реагентом и компонентами, формирующими поверхность и слизистую оболочку клетки, а также компонентами среды и продуктами метаболизма. Это приводит к дополнительному расходу флокулянта. Эти соображения подтверждают результаты опытов, свидетельствующие о том, что добавление к суспензии отмытых клеток полисахарида (декстрана) или белка (желатины) вызывает существенное увеличение расхода полиэлектролита, необходимого для резкого снижения п/по. При этом было показано, что на эффективность извлечения клеток из культуральной жидкости с помощью полиэлектролитов наибольшее влияние оказывают белковые компоненты.
Скачать страницу
[Выходные данные]
![Для выяснения влияния присутствующих в культуральной жидкости продуктов метаболизма — полисахаридов, белков и других на эффективность флокуляции были проведены опыты по концентрированию как нативной, так и отмытой культур E. coli [157]. В качестве последней использовались клетки, дважды отмытые физиологическим раствором, которые отделялись от раствора центрифугированием, а затем ресуспен-зировались до исходной концентрации 0,1 М раствором хлорида натрия. Полученные данные (см. рис. 6.4) свидетельствуют о том, что расход флокулянта, необходимый для достижения одной и той же степени осаждения, для отмытых клеток значительно (в 2—5 раз) меньше, чем для исходной культуральной жидкости. Это можно объяснить тем, что формирование адсорбционного слоя полиэлектролита в последнем случае происходит не непосредственно на клеточной поверхности, а в капсульном липополисахаридном слое, размеры которого (10—150 нм) могут существенно превышать линейные размеры макромолекул флокулянтов. При этом возможно также взаимодействие между реагентом и компонентами, формирующими поверхность и слизистую оболочку клетки, а также компонентами среды и продуктами метаболизма. Это приводит к дополнительному расходу флокулянта. Эти соображения подтверждают результаты опытов, свидетельствующие о том, что добавление к суспензии отмытых клеток полисахарида (декстрана) или белка (желатины) вызывает существенное увеличение расхода полиэлектролита, необходимого для резкого снижения п/по. При этом было показано, что на эффективность извлечения клеток из культуральной жидкости с помощью полиэлектролитов наибольшее влияние оказывают белковые компоненты.](/static/pngbig/293925220.png)